• ELISA試劑盒為什么要平衡至室溫？ 

ELISA試劑盒的溫度平衡對(duì)ELISA實(shí)驗(yàn)很重要，需要實(shí)驗(yàn)者引以為重。試劑盒使用前平衡至室溫的意義在于ELISA實(shí)驗(yàn)對(duì)溫度敏感。

a.平衡濃縮洗液是為了溶解在2~8℃保存時(shí)出現(xiàn)的結(jié)晶。只有平衡至室溫并確保結(jié)晶完全溶解，才能準(zhǔn)確配制洗液的濃度。

b.平衡稀釋液是ELISA實(shí)驗(yàn)在室溫或37度孵育的前提條件。若沒有平衡至室溫，如某些步驟只孵育1小時(shí)，甚至20min，那么ELISA實(shí)驗(yàn)反應(yīng)效率就由于反應(yīng)溫度過低而大大降低，導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)OD值讀數(shù)非常低。

c.預(yù)包被板的平衡有利于開包裝后剩余預(yù)包被板條的保存，預(yù)包被板條保存在真空干燥的鋁箔袋中，平衡至室溫后打開鋁箔袋，就可以避免外界的水汽凝結(jié)在板條上。同時(shí)，拆開包裝的板條要減少在外界暴露的時(shí)間，保留干燥劑在袋中，用膠帶或帶封口的塑料袋密閉封口2~8℃保存，在1個(gè)月內(nèi)使用。

• ELISA的標(biāo)準(zhǔn)品如何操作？ 

標(biāo)準(zhǔn)品是試劑盒的檢測(cè)抗原的一個(gè)度量標(biāo)尺，因此標(biāo)準(zhǔn)品的溶解、倍比稀釋和保存要特別注意以下細(xì)節(jié)：凍干標(biāo)準(zhǔn)品溶解按照說明書的要求, 準(zhǔn)確復(fù)溶。在冰上操作標(biāo)準(zhǔn)品為佳, 靜置5-10min，輕輕搖勻后按照一次量分裝，在-20℃或-70℃保存。標(biāo)準(zhǔn)品嚴(yán)禁反復(fù)凍融。標(biāo)準(zhǔn)品的倍比稀釋應(yīng)事先做好準(zhǔn)備，如離心管的準(zhǔn)備和編號(hào)以及稀釋液的準(zhǔn)備；稀釋時(shí)，應(yīng)充分混勻；采用進(jìn)口或者硅化的EP管，減少蛋白吸附。在實(shí)驗(yàn)孔內(nèi)進(jìn)行倍比稀釋時(shí)，注意操作規(guī)范，槍頭勿刮劃預(yù)包被的孔底。

• ELISA的標(biāo)準(zhǔn)曲線如何擬合？ 

針對(duì)不同情況應(yīng)當(dāng)如何選擇合適的標(biāo)準(zhǔn)曲線呢？

嘗試使用不同標(biāo)度繪制曲線，例如對(duì)數(shù)-對(duì)數(shù)、5-參數(shù)邏輯曲線擬合。

--線性圖：一個(gè)坐標(biāo)軸表示抗原的濃度，另一個(gè)表示讀數(shù)。R2值在此通常用于確定擬合，數(shù)值大于0.99表示擬合非常好。然而，線性圖往往會(huì)壓縮曲線下端上的數(shù)據(jù)點(diǎn)，導(dǎo)致計(jì)算結(jié)果不準(zhǔn)。

--半對(duì)數(shù)圖：幫助抵消線性圖引起的下端壓縮。半對(duì)數(shù)圖使用濃度的對(duì)數(shù)與讀數(shù)的關(guān)系。這種方法通常會(huì)得到數(shù)據(jù)點(diǎn)分布更均勻的S形曲線。

--對(duì)數(shù)/對(duì)數(shù)圖：為低到中濃度范圍提供良好的線性。但范圍的高濃度端則容易失去線性。

--4或5參數(shù)邏輯（4PL或5PL）曲線：方法更復(fù)雜，考慮了其他參數(shù)比如說最 大值和最 小值，因此需要更為復(fù)雜的計(jì)算。4PL假設(shè)拐點(diǎn)周圍對(duì)稱，而5PL考慮了不對(duì)稱的情況，通常更適合免疫分析。如果您的軟件允許，則4PL和5PL將適用于大部分ELISA校正標(biāo)準(zhǔn)曲線。如果您的軟件不允許，則建議選擇是使用半對(duì)數(shù)或?qū)?shù)/對(duì)數(shù)圖。

• ELISA操作中的洗滌要注意哪些？

洗滌是ELISA實(shí)驗(yàn)中最多次數(shù)的操作，也是非常重要的步驟。不嚴(yán)格的洗滌容易出現(xiàn)洗不干凈或交叉污染現(xiàn)象，導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)重復(fù)效果差。不管用多道加樣器、洗瓶、吸管，還是洗板機(jī)，均需嚴(yán)格按照說明書操作，不得減少洗滌步驟、洗滌體積、洗滌時(shí)間和洗滌次數(shù)。注意標(biāo)準(zhǔn)化操作將減少實(shí)驗(yàn)誤差。操作者常出現(xiàn)洗板不干凈現(xiàn)象，請(qǐng)比照“手工洗板小貼士”操作：

a.設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)的時(shí)候要考慮實(shí)驗(yàn)孔的位置，保證甩掉洗液時(shí)，空白孔、低濃度孔或陰性對(duì)照組在上面或一側(cè)，還要注意甩掉洗液的動(dòng)作要迅速、干脆。

b.洗液不要溢出孔外，以免污染相鄰的孔，特別是每次洗板的前兩遍，若高濃度的孔污染了低濃度的孔或空白孔，其造成的交叉污染的孔是洗不掉的，背景肯定會(huì)增高。

c.用干凈的濾紙，不要用衛(wèi)生紙，因?yàn)榧?xì)小粉塵或者碎屑容易吸附到孔底，導(dǎo)致洗板不干凈，結(jié)果偏高或偏低，重復(fù)孔的數(shù)值也會(huì)相差很大。

d.每次拍板不要重復(fù)在一個(gè)地方拍，特別是洗去酶的步驟；拍板不宜過輕，否則拍不干凈，但注意不要太重，以致把板條給拍斷。每次洗板后輕叩幾下，最后一次一定要叩干凈。

e.洗板時(shí)間（靜置1分鐘）和次數(shù)一定要符合要求，洗板時(shí)間太短，洗板效果不佳。延長(zhǎng)洗板時(shí)間和增加洗板次數(shù)可以使背景更干凈。

• ELISA實(shí)驗(yàn)中如何判定終止反應(yīng)的時(shí)間？

判定ELISA終止反應(yīng)時(shí)間建議根據(jù)孔內(nèi)顏色的深淺（深藍(lán)色）來終止反應(yīng)，通常顯色10-20分鐘就可以達(dá)到很好的效果或直接在610~630nm測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線最 高濃度對(duì)應(yīng)的吸光值，在0.7~1.0之間即可選擇終止反應(yīng)。